Minerva Super Fusion Cloning Kit

簡要描述：Minerva Super Fusion Cloning Kit（無縫克隆試劑盒）

產品貨號： M2026L

產品規格：10 μL× 50T

儲存條件：-20℃保存，有效期見外包裝。

產品型號： M2026L

所屬分類：分子生物學

更新時間：2024-10-29

Minerva Super Fusion Cloning Kit（無縫克隆試劑盒） 

產品貨號： M2026L 

產品規格：10 μL× 50T 

儲存條件：-20℃保存，有效期見外包裝。

產品介紹：無縫克隆是一種簡單、快速并且高效的 DNA 定向克隆技術，可將插入片段定向克隆至任意載體的任意位點。 Minerva Super Fusion Cloning Mix 通過識別 DNA 片段和線 性化載體末端的 15-25 bp 同源序列，50℃反應 15-60 min 即可將 DNA 片段和線性化載體高效精確地融合在一起， 完成定向克隆，且克隆陽性率可達 95%以上。 

產品特點：

1. 簡單、快速、高效，可將插入片段克隆至任意線性載體 的任意位點； 

2. 不依賴于連接酶，無載體自連，陽性率可達 95%以上； 

3. 無需考慮插入片段自身攜帶的酶切位點； 

4. 一次反應可完成單至多個片段重組。

使用方法：

一． 制備線性化克隆載體

選擇合適的克隆位點，對載體進行線性化，線性化載體 可以通過酶切或者反向 PCR 擴增完成。 

（1）酶切制備 雙酶切：線性化，轉化背景（假陽性克?。┑?； 單酶切：線性化程度差，可通過適當延長酶切時間來減 少環狀質粒的殘留。 注：（1）雙酶切無需去磷酸化，單酶切需要去磷酸化； （2）酶切完成后，應將快速內切酶失活或對目的產物純化后再用于重 組反應。 （2）反向 PCR 擴增制備 載體質粒 DNA 為模板，克隆位點為分界點，設計一對 反向引物，推薦使用高保真 PCR Mix 進行擴增。

二． 設計插入 PCR 引物片段 PCR 引物的 5’端必須包含與其相鄰片段（插入片段或 載體）末端同源的 15~25 nt（推薦 18 nt）序列。假如載體 為粘性末端，且 3’端突出，則引物設計必須包含突出部分； 若 5’端突出，則引物設計可以包含突出部分，也可以不包含。 插入片段擴增引物： 5’—上游載體末端同源序列+酶切位點（可選）+基因特 異性正向擴增序列—3’ 3’—基因特異性反向擴增序列+酶切位點（可選）+下游 載體末端同源序列—5’

注：盡量選擇無重復序列且 GC 含量均勻的區域進行克隆，當載體克隆 位點上下游 25 nt 區域內 GC 含量為 40~60%時，重組高

三． 插入片段的 PCR 擴增 插入片段可用任意 PCR 酶 (Taq 酶或高保真酶) 擴增， 無需考慮產物末端有無 A 尾 (重組過程中將被去除， 在最 終質粒中不會出現)。 建議使用高保真聚合酶進行擴增以減 少擴增突變的發生。建議使用純化后的 PCR 產物進行無縫 克隆反應，若 PCR 產物經瓊脂糖凝膠電泳鑒定為特異性擴 增產物，可直接可用于無縫克隆反應，但加樣的體積不宜超 過反應總體積的 20% 。

四．無縫克隆反應：

1. 冰水浴中配制以下反應體系：1.最適載體用量（ng）= 0.02×載體堿基對數，即 0.03 pmol。 2 插入單片段時，最適片段用量（ng）= 0.04×片段堿基對數；插入多 片段時，每片段量（ng）= 0.02×片段堿基對數。 注：（1）如果插入的單片段長度大于載體，那么應互換載體與插入片段 用量； （2）如果插入的片段長度小于 200 bp，那么要使用 5 倍載體的用量； （3）如果按上述公式計算得到的用量低于低/高于值，那么建議 直接按低/用量使用； （4）載體或插入片段過長，片段數量過多，均會降低陽性率。 體系配制完成后，輕輕吹吸數次混勻各組分，避免產生 氣泡即可，切勿渦旋。

2. 將反應體系置于 50℃，反應 15-60 min。 注：（1）推薦使用溫控比較精準的儀器進行反應，如 PCR 儀，反應時 間不足或過長都會降低克隆效率； （2）當載體骨架在 10 kb 以上或插入片段在 4 kb 以上時，建議延長反 應時間到 30~60 min； （3）50℃反應完成后，建議進行瞬時離心，將反應液收集至管底。 3. 將反應液離心管置于冰水浴中冷卻，直接進行轉化或儲 存于-20℃。 注：-20℃儲存的重組產物，建議在 1 周內使用。 

五． 克隆產物轉化 在 100 μL 感受態細胞中加入 5-10 μL 反應液，輕柔吹 吸混勻，置于冰上 30 min。42℃熱激 45~60s，冰浴 5 min。 加入 500 μL SOC 或 LB 培養基，37℃振蕩培養 40-60 min （200 rpm）。將菌液均勻涂布在含相應抗生素的平板上，倒 置于 37℃培養箱培養過夜。 注：（1）不同感受態細胞最后的克隆陽性率會有所差別，推 薦使用轉化效率>108 cfu/μg 的感受態細胞； （2）PCR 產物與線性化載體的數量和純度決定了菌落數； （3）陽性對照平板通常生長大量白色單菌落，陰性對照平 板只生長很少的菌落。 

六． 陽性克隆檢測菌落 PCR 鑒定：挑取單菌落置于 10 μL ddH2O 中混勻， 95℃裂解 10 min，取 1 μL 作模板，進行菌落 PCR 鑒定，推薦使用 UE 2×Taq PCR Master Mix（Green）（S2045）。 酶切鑒定：將單菌落接種到抗性培養基中培養過夜，提 取質粒進行酶切鑒定。

注意：（1）建議菌落 PCR 時，至少使用一條通用引物，可有效避免假 陽性結果； （2）必要時可進一步對陽性結果進行測序鑒定